naturesQue MaxOss P

Ksenogeni svinjski nadomjesni koštani materijal

naturesQue MaxOss P dobiva se od svinjske spužvaste kosti i ima veliku otvorenu poroznost zbog fine i složene trabekularne strukture. Otvoreni prostori su međusobno povezani i nude obilje prostora za formiranje, sazrijevanje i remodeliranje kosti. Velika unutarnja površina nudi puno slobodnog potencijala za staničnu adheziju.

Preuzmite brošuru za liniju proizvoda

Dokumentirana edukacija pacijenata o augmentaciji kosti

Prozračan i lagan – zašto su velike šupljine toliko važne u koštanim nadomjescima

Poroznost je jedno od najvažnijih svojstava nadomjesnog koštanog materijala. Kroz pore stanice mogu migrirati u nadomjesni koštani materijal, a novonastale krvne žile povezuju se s krvožilnom mrežom kako bi nova kost u području regeneracije bila opskrbljena kisikom i hranjivim tvarima.

Stanice koje tvore kost preferiraju velike promjere pora [1], makropore naturalsQue MaxOss P velike su između 100 – 1000 µm i stoga su optimalno prikladne za useljavanje stanica koje tvore kost. Nakon koštane integracije, remodeliranje i prilagodba kosti na opterećenje zahtijeva puno prostora koji je dostupan u visoko poroznoj strukturi naturalsQue MaxOss P.

Struktura i dizajn

Trabekularna mreža je anatomsko-arhitektonsko remek djelo. Zbog rasporeda koštanih greda, može se postići visoka stabilnost uz malu uporabu tvari. To stvara strukturu koja ima vrlo veliku površinu.

Medicinska tehnologija iskorištava ta svojstva pri proizvodnji ksenogenih spužvastih nadomjesnih materijala za kosti.

Tijekom obrade svinjskog koštanog tkiva očuvana je prirodna trabekularna mreža i struktura kristala karbonatnog apatita u mineralnoj fazi. Kristali karbonatapatita podržavaju aktivnost stanica u različitim fazama cijeljenja kosti.

Analitička mjerenja (IR spektar, difrakcija X-zraka) pokazuju sličnost u mineralnoj fazi i kristalnoj strukturi između naturalsQue MaxOss P i zrelog prirodnog koštanog tkiva.

Skenirajuća elektronska mikroskopska snimka granula naturesQue MaxOss P.

naturesQue MaxOss P i kost – trajna veza

Puno prostora za kost – dizajn naturalsQue MaxOss P proizlazi iz trabekularne strukture kosti: složenog okvira uskih koštanih greda i širokih međusobno povezanih prostora. To stvara veliku površinu na koju se stanice koje tvore kost mogu prilijepiti i taložiti novu koštanu matricu. U porama velikog volumena može se nesmetano odvijati vaskularizacija i pregradnja novonastale kosti. Ovo stvara stabilnu, trajnu vezu između naturesQue MaxOss P i nove kosti.

Sigurnost

naturesQue MaxOss P siguran je koštani nadomjesni materijal i ispunjava
zahtjeve Direktive 93/42/EEC.

naturesQue MaxOss P u kontekstu

Podrijetlo

Svinjska spužvasta kost

Sastav

Mineralna faza spužvaste kosti
Održavanje prirodnog sadržaja karbonatnog apatita

Obrada

Svinjska kost
Čišćenje i uklanjanje proteina na visokoj temperaturi
Ispiranje puferskom otopinom
Određivanje veličine, prosijavanje, pakiranje i sterilizacija
QS inspekcija

Primjena

Moguće je miješanje s autolognim pripravcima kosti, krvlju pacijenta ili fiziološkom otopinom.
Samo u izravnom kontaktu s dobro prokrvljenom lokalnom kosti
Kortikalnu kost treba perforirati ručno.

Konzistencija

Granule su vrlo porozne, izbjegavajte pritisak na granule kako biste izbjegli drobljenje krhke trabekularne strukture

Resorpcija

Integracija u novostvorenu kost
Spor proces resorpcije, površinski tragovi resorpcije
Stabilan skelet za kost

Aiken SS, Bendkowski A. In search of the “optimal” material for dental bone grafting. EDI Journal 2011;4:2-7

Publikationen naturesQue MaxOss P

Ghandi Y, Bhatavdekar. MIDAS (Minimally Invasive Drilling And Styptic) protocol - A modified approach to treating patients under therapeutic anticoagulants. Journal of Oral Biology and Craniofacial Research. 2019;9(3):208-211**
PDF

Igelhaut G. Neues porcines Knochenersatzmaterial. Unbedingt porös. Interview. Dental Magazin. 2019 (09)**
PDF

Guarnieri R, Stefanelli L, De Angelis F, Mencio F, Pompa G, Di Carlo S. Extraction Socket Preservation Using Porcine-Derived Collagen Membrane Alone or Associated with Porcine-Derived Bone. Clinical Results of Randomized Controlled Study. Journal of Oral & Maxillofacial Research. 2017;8(3):e5**
PDF

Guarnieri R, DeVilliers P, Grande M, Stefanelli LV, Di Carlo S, Pompa G. Histologic evaluation of bone healing of adjacent alveolar sockets grafted with bovine–and porcine-derived bone: a comparative case report in humans. Regenerative Biomaterials. 2017;125-128**

Guarnieri R, Testarelli L, Stefanelli L, De Angelis F, Mencio F, Pompa G, Di Carlo S. Bone Healing in Extraction Sockets Covered With Collagen Membrane Alone or Associated With Porcine-Derived Bone Graft: a Comparative Histological and Histomorphometric Analysis. Journal of Oral & Maxillofacial Research. 2017;8(4):1-9
PDF

Chen HC, Yuen D, Li ST. Porcine anorganic bone mineral for guided bone regeneration in dental surgeries Part I: Development and in vitro characterization. Front. Bioeng. Biotechnol. Conference Abstract: 10th World Biomaterials Congress. 2016;doi: 10.3389/conf.FBIOE.2016.01.02758*
PDF

Chen HC, Lee NS; Yuen D, Li ST. Porcine anorganic bone mineral for guided bone regeneration in dental surgeries. Part II: In vivo animal study and human case study. Front. Bioeng. Biotechnol. Conference Abstract: 10th World Biomaterials Congress. 2016;doi: 10.3389/conf.FBIOE.2016.01.02705*
PDF

Li ST, Chen HC, Yuen D. Isolation and Characterization of a Porous Carbonate Apatite From Porcine Cancellous Bone. Science, Technology, Innovation. 2014;1-13
PDF

Rupani A, Hidalgo-Bastida LA, Rutten F, Dent A, Turner I, Cartmell S. Osteoblast activity on carbonated hydroxyapatite. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 2012;100(4):1089-96

Kanayama K, Sriarj W, Shimokawa, H, Ohya, K, Doi, Y, Shibutani, T. Osteoclast and Osteoblast Activities on Carbonate Apatite Plates in Cell Cultures. Journal of Biomaterial Applications. 2011;26(4):435-449

Hannink G, Arts JJ. Bioresorbability, porosity and mechanical strength of bone substitutes: what is optimal for bone regeneration? Injury. 2011;42 S2:S22-25.

Figueiredo M, Fernando A, Martins G, Freitas J, Judas F, Figueiredo H. Effect of the calcination temperature on the composition and microstructure of hydroxyapatite derived from human and animal bone. Original Research Article Ceramics International. 2010; 36(8):2383-2393

Spense G, Patel N, Brooks R, Rushton N. Osteoclastogenesis on hydroxyapatite ceramics: the effect of carbonate substitution. J Biomed Mater Res A. 2010;92(4):1292-1300

Spense G, Patel N, Brooks R, Rushton N. Carbonate Substituted Hydroxyapatite: Resorption by Osteoclasts Modifies the Osteoblastic Response. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 2009

Klenke FM, Liu Y, Yuan H, Hunziker EB, Siebenrock KA, Hofstetter W. Impact of pore size on the vascularization and osseointegration of ceramic bone substitutes in vivo. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 2007;777-786
Abstract

Landi E, Celotti G., Logroscino G, Tampieri A. Carbonated Hydroxyapatite as Bone Substitute. Journal of the European Ceramic Society. 2003;23: 2931-2937

Deligianni DD, Katsala ND, Koutsoukos PG, Missirlis YF. Effect of Surface Roughness of Hydroxyapatite on Human Bone Marrow Cell Adhesion, Proliferation, Differentiation and Detachment Strength. Elsevier Biomaterials. 2001;22:87-96.
Abstract

Ellies LG, Carter JM, Natiella JR, Featherstone JDB, Nelson DGA. Quantitative Analysis of Early In Vivo Tissue Response to Synthetic Apatite Implants. J Biomed Mater Res 1988;22:137-148

*MatrixOss is a trade name from Collagen Matrix, Inc. and identical to naturesQue MaxOss P
**MinerOss XP is a trade name from BioHorizons and identical to naturesQue MaxOss P